1. Sistemas de Biorreactores: Perspectiva Operativa
Desde el punto de vista operativo, los biorreactores se clasifican en tres tipos según el flujo de entrada y salida:
Discontinuo (Batch):
No hay alimentación ni salida durante el proceso. Se carga todo el medio al inicio, se inocula y se deja evolucionar hasta completar el cultivo.
Semicontinuo (Fed-Batch):
Hay alimentación continua o por etapas, pero no hay salida. Se usa para prolongar la fase de crecimiento exponencial y aumentar la productividad.
Continuo (Quimiostato):
Hay alimentación y salida constantes. Permite mantener condiciones estables (estado estacionario) y producción continua.
Característica | RTA (Tanque Agitado) | Air Lift | Lecho Fluidizado | Lecho Empaquetado |
Agitación | Mecánica (turbinas y deflectores) | Neumática (circulación inducida por aire) | Flujo ascendente del fluido | No hay agitación activa |
Oxigenación | Aire inyectado desde el fondo | Aire inyectado que genera movimiento | Puede incluir aireación | Limitada, por flujo de líquido |
Uso típico | Cultivos celulares aeróbicos | Grandes volúmenes, baja cizalla | Enzimas inmovilizadas, flóculos celulares | Enzimas inmovilizadas |
Volumen útil | Pequeño a mediano | Grande | Mediano | Variable, depende del diseño |
Ventajas | Buen mezclado, control preciso | Menor daño celular, simple mecánicamente | Buena transferencia de masa | Alta retención del biocatalizador |
Desventajas | Daño mecánico posible, alta energía | Menor control de parámetros | Difícil mantener homogéneo | Gradientes de concentración, difícil control p |
4. Balances de Masa: Continuo, Discontinuo y Semicontinuo
Tipo de operación | Condiciones clave | Duración | |
Discontinuo (Batch) | No hay entrada ni salida (F1 = F2 = 0) | Limitada por nutrientes | |
Semicontinuo (Fed-Batch) | Entrada presente (F1 ≠ 0), sin salida (F2 = 0) | Limitada por volumen | |
Continuo (Quimiostato) | Entrada y salida iguales (F1 = F2), estado estacionario | Ilimitada (teóricamente) |
Elementos en un proceso de biorreacción:
✔️ 1. Elemento Biológico
Biocatalizador:
Microorganismos (bacterias, hongos, levaduras)
Células animales o vegetales
Enzimas libres o inmovilizadas
Orgánulos (mitocondrias, cloroplastos)
✔️ 2. Sustrato o Medio de Cultivo
Proporciona los nutrientes necesarios para el crecimiento del biocatalizador.
Componentes:
Fuente de carbono (glucosa, lactosa)
Fuente de nitrógeno (sales amoniacales, peptonas)
Sales minerales
Factores de crecimiento, vitaminas
✔️ 3. Biorreactor (Recipiente de Reacción)
Contenedor estéril donde se lleva a cabo el proceso biológico.
Controla variables como:
pH
Temperatura
Oxígeno disuelto
Agitación y aireación
Espuma
Presión
✔️ 4. Sistemas de Control y Monitoreo
Sensores y actuadores que permiten mantener condiciones óptimas:
Sensor de pH
Sensor de temperatura
Sensor de oxígeno (OD)
Controlador de espuma
Control de flujo de aire y nutrientes
Bombas peristálticas (dosificación de ácido, álcalis, antiespumantes)
✔️ 5. Sistema de Recuperación y Purificación del Producto
Procesos posteriores a la biorreacción para extraer y purificar el producto:
Ruptura celular (si el producto es intracelular)
Clarificación
Concentración
Purificación
Formulación final
Modelos Operativos / Clasificación Operativa / Partes del Biorreactor
Clasificación operativa de biosensores (modelos operativos): Los biosensores pueden clasificarse según distintos criterios:
Por tipo de interacción entre el analito y el bioreceptor.
Por el método de detección (electroquímico, óptico, etc.).
Por la naturaleza del bioreceptor (enzima, anticuerpo, etc.).
Por el tipo de transductor.
Partes elementales del biosensor (equivalente funcional a un biorreactor miniaturizado):
Elemento de reconocimiento biológico (bioreceptor):
Ejemplos: Enzimas, anticuerpos, ácidos nucleicos, células, tejidos, receptores, etc.
Sistema de inmovilización:
Fijación del bioreceptor a una matriz o membrana.
Técnicas: adsorción, atrapamiento, enlaces covalentes, etc.
Transductor:
Convierte la señal bioquímica en señal eléctrica.
Tipos: Electroquímicos, ópticos, piezoeléctricos, termométricos, nanomecánicos.
Sistema de detección y lectura:
Procesamiento de la señal para cuantificar o identificar el analito.
Concepto de Biosensor
Un biosensor es un dispositivo compacto de análisis que integra un elemento de reconocimiento biológico o biomimético con un sistema de transducción que convierte la interacción entre analito y receptor en una señal medible.
PCR (Reacción en Cadena de la Polimerasa)
Basada en:
Amplificación de fragmentos específicos de ADN a partir de cebadores complementarios.
Uso de una ADN polimerasa termoestable (Taq polimerasa).
Requiere ciclos de temperatura en un termociclador.
Etapas básicas:
Desnaturalización (94-95°C): Separación de cadenas de ADN.
Alineamiento de cebadores (≈64°C).
Extensión/síntesis (72°C): Replicación del fragmento objetivo.
Concepto: Técnica que permite amplificar regiones específicas de ADN de forma exponencial mediante ciclos térmicos, siendo muy útil para detectar secuencias genéticas mínimas en muestras complejas.
Concepto de ELISA
ELISA (Enzyme-Linked Immunosorbent Assay) es una técnica inmunológica que se basa en la unión específica antígeno-anticuerpo y en la acción catalítica de una enzima unida al anticuerpo o antígeno para generar una señal detectable, usualmente un cambio de color.
📊 Clasificación de los Biosensores
1. Biocatalíticos
Se basan en enzimas o sistemas vivos (enzimas, células, tejidos).
El analito es transformado químicamente por el biocatalizador.
La señal se produce al formarse o desaparecer un producto o sustrato.
📌 Ejemplo: Detección de glucosa por glucosa oxidasa.
2. De Bioafinidad
No transforman al analito, solo se unen específicamente a él.
Se forma un complejo analito-receptor (por afinidad).
Usa elementos como anticuerpos, lectinas, ácidos nucleicos, aptámeros.
La señal es el resultado de esta unión.
📌 Ejemplo: Test ELISA, detección de OGM.
⚖️ Diferencia entre Catalíticos y de Afinidad
Característica | Biocatalíticos | De Bioafinidad |
¿Transforma el analito? | Sí | No |
¿Qué se detecta? | Producto/sustrato de la reacción | Formación de un complejo (analito-receptor) |
Elementos | Enzimas, células, orgánulos, tejidos | Anticuerpos, lectinas, ADN, aptámeros |
Tipo de señal | Reacción química | Unión molecular |
🧪 ¿Qué es PCR?
PCR (Reacción en cadena de la polimerasa): técnica que amplifica regiones específicas de ADN mediante ciclos térmicos, utilizando una ADN polimerasa termoestable (como Taq).
🔧 Elementos necesarios:
ADN molde.
Primers (cebadores): marcan el inicio del ADN a copiar.
ADN polimerasa termoestable (ej: Taq).
dNTPs: nucleótidos libres.
Iones Mg²⁺: cofactor.
Buffer (tampón).
Calor/Termociclador.
🔁 ¿En qué consiste PCR?
Desnaturalización (94–95°C): separación de cadenas del ADN.
Alineamiento (≈64°C): unión de los primers al ADN molde.
Extensión (72°C): la polimerasa sintetiza ADN nuevo desde los primers.
🔁 Este ciclo se repite muchas veces (20–40), generando millones de copias.
💡 Aplicaciones de PCR
Identificación de OGM.
Autentificación de especies (cárnicos, pesqueros, vegetales).
Detección de microorganismos (bacterias, virus).
Control de fraudes en alimentos.
🔄 PCR Múltiple
Variante de PCR donde se usan varios pares de primers en una sola reacción, para detectar diferentes genes/analitos al mismo tiempo.
🔹 Permite analizar varias dianas simultáneamente.
🔹 Útil en identificación múltiple de especies o detección de varios microorganismos.
🧬 Etapas PCR (esquema pag. 17)
Desnaturalización: separación de cadenas de ADN (~95°C).
Alineamiento: primers se unen (~64°C).
Extensión: polimerasa copia ADN (~72°C).
⚡️ Electroforesis
🔬 ¿Qué es y para qué sirve?
Es una técnica de separación de ácidos nucleicos (ADN o ARN) basada en su tamaño y carga. Se usa para:
Verificar productos de PCR.
Estimar el tamaño de fragmentos de ADN.
Confirmar pureza y cantidad de ADN/ARN.
⚙️ Principio de funcionamiento:
El ADN y ARN tienen carga negativa, por lo que migran hacia el ánodo (polo positivo) en un campo eléctrico.
La velocidad de migración depende del tamaño (los + pequeños se mueven + rápido) y de la conformación (superenrollados vs. lineales).
Los fragmentos se separan en un gel (agarosa o acrilamida) que actúa como tamiz molecular.
🧪 ¿Qué necesitamos para hacer una electroforesis?
Componente | Función |
Gel de agarosa (ADN) o acrilamida (ARN) | Medio poroso para separar los fragmentos. |
Tampón TAE o TBE | Conduce la corriente y mantiene pH. |
Red Safe / Bromuro de etidio (EtBr) | Intercalante que permite visualizar ADN bajo luz UV. Red Safe es + seguro. |
Tampón de carga (loading buffer) | Añade peso (glicerol) y colorantes (azul de bromofenol, xilen cianol) para seguir la migración. |
Marcadores de tamaño (ladder) | Fragmentos de ADN de tamaño conocido para comparar. |
Fuente de corriente eléctrica | Aplica el voltaje para que los fragmentos se muevan. |
Cámara de electroforesis | Contiene el gel y los electrodos. |
📌 TAE vs. TBE:
Característica | TAE (Tris-Acetato-EDTA) | TBE (Tris-Borato-EDTA) |
Mejor para | Fragmentos largos | Resolución alta de fragmentos pequeños |
Uso | + común en ADN estándar | Electroforesis prolongadas |
Ventaja | – iónico (- calor) | Mayor capacidad tampón |
📏 Disposición de geles:
ADN: Geles horizontales.
ARN: Geles verticales (por ser + sensibles y requerir mejor resolución).
🌈 Espectrofotometría (Cuantificación de ADN)
🔬 ¿Qué mide?
Mide la absorbancia de luz ultravioleta por los ácidos nucleicos para calcular su concentración y pureza.
📏 Longitudes de onda clave:
Longitud | ¿Qué mide? |
260 nm | Absorbancia del ADN y ARN (bases nitrogenadas) |
280 nm | Absorbancia de proteínas (aminoácidos aromáticos como triptófano, tirosina) |
🔬 ¿Qué es la qPCR?
La qPCR (quantitative PCR) o PCR en tiempo real es una variante de la PCR convencional que permite detectar y cuantificar ADN a medida que se amplifica, en tiempo real, gracias a la fluorescencia emitida durante el proceso.
⚙️ ¿En qué se fundamenta?
Se basa en los mismos principios y componentes que la PCR normal, pero con la incorporación de fluoróforos que permiten medir la fluorescencia proporcional a la cantidad de ADN amplificado.
🧪 Componentes necesarios (iguales a PCR normal):
ADN molde
Cebadores (primers) específicos de la región a amplificar
dNTPs (nucleótidos libres)
ADN polimerasa termoestable (Taq polimerasa)
Iones Mg²⁺ y buffer
Termociclador especial con detección de fluorescencia
🌟 Diferencia Principal: Uso de Fluoróforos
La qPCR incorpora fluoróforos que emiten luz fluorescente cuando se amplifica el ADN.
🔹 La intensidad de la fluorescencia es proporcional a la cantidad de ADN presente en cada ciclo.
Cuanta + fluorescencia se emite → + ADN hay → mayor concentración de muestra inicial.
🔦 Tipos de Fluoróforos que Debes Recordar
Fluoróforo | ¿Qué debes saber? |
SYBR Green | Se une al ADN de doble cadena. Genérico. Simple, barato. |
TaqMan | + específico. Basado en sondas (oligonucleótidos marcados). |
📌 No es necesario saber cómo funcionan internamente, solo recordar sus nombres y que son específicos de qPCR.
📈 ¿Qué Mide la qPCR?
Mide la fluorescencia emitida en cada ciclo.
Según la intensidad, se deduce cuánto ADN hay.
Permite hacer cuantificación absoluta (con estándar) o relativa (comparativa).
conclusión: a – adn + ciclos necesito para llegar a ese valor de referencia CT y a + AND – ciclos.
Nct = Ni x 2^ct
NCT= Cantidad de ADN que tengo al llegar a ese valor de fluorescencia
Ni= Cantidad de ADN inicial
CT= Ciclo de fluorescencia de referencia
Explicación de la gráfica y de la fórmula
y = -a X + b